عنوان پایان‌نامه
تکوین دستگاه گوارش ، اسکلت سر و الگوی رشد گونه سیم معمولی (Abramis brama) در دوران اولیه توسعه
- مقطع تحصیلی
- دکتری تخصصی PhD
- محل دفاع
- کتابخانه مرکزی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی شماره ثبت: 7303;کتابخانه مرکزی -تالار اطلاع رسانی شماره ثبت: 80087;کتابخانه مرکزی پردیس کشاورزی و منابع طبیعی شماره ثبت: 7303;کتابخانه مرکزی -تالار اطلاع رسانی شماره ثبت: 80087
- تاریخ دفاع
- ۱۵ اسفند ۱۳۹۵
- دانشجو
- محمدرضا صحرائیان
- استاد راهنما
- سهیل ایگدری
- چکیده
- در این پژوهش روند الگوی رشد آلومتری (بر اساس روش های سنتی و هندسی) و نحوه تکوین ساختار های دستگاه گوارش شامل (دهانی حلقی، مری، روده، کبد و لوزالمعده) و آنزیم های دستگاه گوارش (تریپسین، کیموتریپسین،لیپاز، آمیلاز، الکالین فسفاتاز،آمینوپپتیداز ، کربکسی پپتیداز و الفا استراز) و اسکلت سر (اسکلت احشایی و عصبی) ماهی سیم معمولی (Abramis brama) در طی مراحل اولیه تکوین برای بررسی ها ارتباط تغییرات ریختی با فیزیولوژیکی به منظور فراهم آوردن اطلاعاتی برای بهینه سازی پروتکل غذایی در یک بازه زمانی دو ماه مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که مراحل اولیه تکوین ماهی سیم معمولی براساس الگوهای رشد آلومتری و توسعه ساختارهای ریختی به چهار مرحله قابل تقسیم است. مرحله I یا لاروی از زمان تفریخ تا 6 روز بعد از آن می باشد. مرحله II یا مرحله پست لاروی ازروز6 تا 18 بعد از تفریخ ادامه دارد. مرحله III یا پیش جوانی که از روز 18 بعد از تفریخ تا 35 روز بعد از آن ادامه دارد. مرحله IV یا نوجوانی نیز از 35 روز بعد از تفریخ تا آخر دوره پرورش ادامه داشت. نتایج بخش الگوی رشد ماهی سیم معمولی به روش ریخت سنجی هندسی نیز حاکی از توسعه ساختار ریختی لارو ماهی سیم معمولی به چهار مرحله با جزئیات بیشتر بود، که شامل I - مرحله پیش لاروی یا Perlarvae شامل دو روز اول حیات می باشد. II - مرحله دوم لاروی که خود شامل سه زیر مرحله (:a Perflexion که از روز دوم تا روز چهار بعد از تفریخ، :b Flexion که از روز 5 بعد از تفریخ تا 12 روز بعد از تفریخ، :c Postflexion از روزهای 14 الی 20 بعد از تفریخ) بود III- مرحله سوم پیش جوانی Perjuveniles در ماهی سیم از روز 20 آغاز و تا 30 روز بعد از تفریخ ادامه پیدا می کند. IV- نهایتا مرحله جوانی یا Juveniles نیز از روز 35 بعد از تفریخ تا انتهای دوره ادامه پیدا می کند. نتایج این پژوهش همچنین آشکار کرد که هرچند هر دو روش الگوی آلومتری و ریخت شناسی هندسی توان تقسیم بندی لارو به دوره های پرورشی مناسب را دارند ولی الگوی رشد ریخت شناسی هندسی بسیار دقیق تر و گویا تر منطبق تر با رخ داده های فیزیولوژیکی موجود در روند تکوین لاروی ماهی سیم معمولی می باشد. بطوری که فاز لاروی Perlarvae نشانه لارو غیر تمایز یافته بوده و زمانی که اندام های اولیه درحال شکل گیری می باشند، فاز لاروی Perflexion متناسب با دوره تغذیه مرکب و جذب کیسه زرده دوره ای که لارو تمرکز بر روی توسعه اندامهایی چون دندان حلقی، پارااسفنوئید توسعه رشته های آبششی، ساختار دندانی اپیتلیومی، موکوس و غدد چشایی مری، پرزهای روده، لوبول های کبدی مجاری صفراوی و پانکراسی و توسعه آنزیم های گوارشی دارد . فاز لاروی Flexion متناسب با دوره تغذیه خارجی و ارتقا مکانیسم های تغذیه ای (از تغذیه پینوسیتوزی و سیستم درون سلولی به تغذیه برون سلولی) و تنفس (از تنفس پوستی به تنفس آبششی) همراه است، فازلاروی Postflexion که در واقع آخرین مرحله لاروی می باشد متناسب با دوره سازگاری با غذای دستی است این مرحله با توسعه معنی دار آنزیم های گوارشی (آمیلاز، لیپاز،کیموتریپسین، کربکسی پپتیداز و آلفا استراز) همراه است. فاز پیش جوانی Perjuveniles همزمان با توسعه اندام های با اولویت کمتر (بخش عصبی اسکلتی و ایجاد فلس ) در لارو ماهی سیم معمولی می باشد و نوساناتی در آنزیم های گوارشی (شروع افزایش آنزیم تریپسین و آمینوپپتیداز ،افت معنی دار آنزیم آمیلاز، آلکالین فسفاتاز و کربکسی پپتیداز) که احتمالا ناشی از تغییر رژیم غذایی و یا نیچ اکولوژیکی (تغییر نیاز) است رخ می دهد و نهایتا فاز جوانی Juveniles دوره تبدیل ماهی سیم معمولی به شکل مینیاتوری گونه بالغ است. بر اساس نتایج این تحقیق پیشنهاد می شود که ماهی سیم معمولی تا ده روز اول حیات با غذای زنده (روتیفر و ناپلی دافنی) و شیر خشک مورد تغذیه قرار گیرد. تغذیه با جیره SFK (جیره غذایی مورد استفاده در مرکز تکثیر) پیشنهاد شده در مورد لارو می تواند به صورت درصدی تا طی ده روز دوم حیات با غذای زنده جایگزین شود. همچنین نتایج این تحقیق نشان داد جیره SFKاین قابلیت را دارد که تا روز 40 بعد از تفریخ نیاز های غذایی لارو را تامین کند و بعد از آن جیره متناسب با نیاز های لارو ماهی سیم معمولی باید در دستور کار قرار گیرد گیرد که نه تنها در هزینه صرفه جویی شود بلکه سبب بهبود کیفیت محصول نهایی گردد.
- Abstract
- Ontogeny of the growth pattern (i.e. based on allometric and geometric morphometrics methods), digestive tract structure (Buccopharynx, Esophagus, Intestine, Liver and Pancreases region), Digestive enzyme activitives (Alpha-amylase, Trypsin and Chymotrypsin, Lipase, Alkaline phosphatase, Aminopeptidase N, Carboxypeptidase A and alpha esterase) and development of Cephalic skeleton (neurocranium and viscerocranium) were examined for determination of the correlation between morphological changes and physiological event to provide basic data to improve the Common Bream (Abramis brama ) feeding protocols. The results showed that early development of A.brama could be divided into four stages based on their allometric growth patterns. Stage I or larval stage is occurred from hatching up to 6 dph (day post hatching), second developmental stage or the post larval stage including 6 to18 dph, Stages III or per-juvenile consist of 18 to 35 dph and forth developmental is started from 35 dph upward. The analysis of the morphological development by the geometric morphometric method revealed the early development of this species also divided into four stages including the I-Perlarvae (hatchin time to 2 dph, II- larvae including three sub stage (sub stage a: Perflexion (2-4dph), sub stage b:Flexion (5-12) and sub stage c:Postflexion (12-20), III -Perjuveniles (20-30 dph) and Juveniles (30 – 60dph) for Juveniles rearing period. This information revealed that allometric and Geometric morphometric methods are able to category the common Bream early life history in to the suitable rearing period stages for fish larvae management, growth pattern described by Geometric morphometric method and more precisely and eloquent coincided the physiological events referring to the process of fish larvae organization during the early development. For instance Perlarvae phase was referred to the newly hatched larvae without any distinctive or developed organs, perflexion phase cover Exo-Endogenous feeding period in which yolk sack were absorbed and larvae focused on developing vital organs which associated with feeding and respiration such as pharyngeal teeth, parasphenoid bone, gill filaments, tooth like epithelium structure, goblet cells, taste buds, intestinal microvilli, bile ducts and pancreas and liver lobules, as well as digestive enzymes. Flexion phase coincident with promote the feeding (from pinositosis and intercellular digestion mechanism onto extracellular digestion mechanism) and respiration (from surface of the respiratory in to gill ventilation) mechanism. Postflexion phase was the last larvae period correspond with significant changing of digestive enzyme profile such as Alpha-amylase, Chymotrypsin, Lipase, Carboxypeptidase A and alpha esterase. Hence its seems suitable time for introducing artificial feed gradually. Perjuveniles phase was the period that Bream larvae developed organs with second priority (i.e.neurocranium). In this period also some modulation were observed in the trend of enzyme activity (significant increasing in the Trypsin and Aminopeptidase N and significant decreasing was observed in Alpha-amylase, Alkaline phosphatase, Carboxypeptidase A) that could be interpreted in shift diet regime and changing in the ecological niches. Ultimate Juveniles phase is period that bream larvae changes into the miniature adult formed. Based on the result obtained in this project, feeding protocol started by live food (rotifer and daphnia napli) and milk powder for feeding larvae till the first ten days and followed by replacing live food by SFK diet (dry food) during the second ten days gradually and then completely Bream larvae feed by the dry food. Histological investigation also revealed the SFK formulation diet able to provide larvae requirement until 40 dph and the its should be changed by the new formulated diet from 40 dph onward. Key words: Allometric growth pattern, Geometric Morphometrics growth pattern,Digestive system, Digestive enzyme, Cephalic Skeleton, Common Bream, Abramis brama, Electron and Light Microscope
